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96 孔板PCR片段纯化回收试剂盒 (离心法)1次

96 孔板PCR片段纯化回收试剂盒 (离心法)1次

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96 孔板 PCR 片段纯化回收试剂盒 ( 离心法 )1次多少钱是一种在较高温度下保存 RNA 样品的非冻型无毒溶液,它能 迅速渗入细胞内,通过高效抑制 RNase 的活性而保存 RNA 的完整性。

96 孔板PCR片段纯化回收试剂盒 (离心法)1次 详细资料

注意事项:
96 孔板 PCR 片段纯化回收试剂盒 ( 离心法 )1次多少钱● 溶液PE *次使用前请按瓶上标签加入4 倍体积的无水乙醇,即15 ml 溶液PE 中加入60 ml 无水乙醇,20 ml 溶液PE 中加入80 ml 无水乙醇,使用后立即盖紧盖子。
● 本产品对电泳使用的Agarose 种类没有严格限制,可以使用普通Agarose 。为了保证回收DNA 的质量和DNA 回收效率,希望使用高纯度的Agarose ,但没有必要一定要使用低熔点的Agarose 等。
● 电泳时请使用新鲜配制的TAE 电泳缓冲液,以免影响电泳及回收效果。
● 请适当延长电泳时间,在条带分离清晰后进行切胶回收,以免回收到多余杂带。
● 为提高DNA 回收收率,切胶时应尽量除去多余的胶块。
● 本试剂盒纯化柱的DNA 吸附能力强。但如果DNA 浓度小,或DNA 初始量少,回收率将会偏低。
● 溶液Eluent(10 mM Tris-HCl, pH 8.5)中不含EDTA,其收集的DNA 片段可直接用于各种酶促反应等,不会影响后续试验。
● 为了保证回收效率,请不要使用未调整pH 值的超纯水洗脱目的片段。

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96 孔板 PCR 片段纯化回收试剂盒 ( 离心法 )1次多少钱

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● 请严格按照操作步骤操作。

问:常用的DNA 浓度及纯度检测方法有哪些?
96 孔板 PCR 片段纯化回收试剂盒 ( 离心法 )1次多少钱答:回收得到的DNA 片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。琼脂糖凝胶电泳通过对比定量的Marker 来定量浓度;紫外分光检测OD260/280 比值,OD260/280 比值在1.7-1.9 之间说明所得  DNA  纯度较好,如果洗脱时不使用溶液Eluent而使用去离子水,比值会偏低,因为pH 值和离子存在会影响光吸收值,但不表示纯度低。

问:长片段回收时应注意哪些问题?
答:96 孔板 PCR 片段纯化回收试剂盒 ( 离心法 )1次多少钱当DNA 片段长度较长(5   kb 以上)时,回收效率会有所下降,这是DNA 切胶回收时的常见现象。此时建议按以下方法解决问题:
    1 适当增加待回收DNA 样品的点样量;
    2 由于长片段DNA 不易从树脂上洗脱下来,建议洗脱两次,可以提高洗脱效率;
    3 减少操作过程中对长片段DNA 的物理损伤,如混合振荡操作不要过于剧烈,切胶时不要将DNA 长时间暴露在紫外等下。

操作步骤:
1  96 孔板 PCR 片段纯化回收试剂盒 ( 离心法 )1次多少钱切取含有目的DNA 片段的琼脂糖凝胶条带。
   ● 尽量切除不含有目的DNA 部分的凝胶,减少凝胶体积,提高DNA 回收率。
   ● 切胶时,请使用长波长UV  (360 nm )光盒。且不要将DNA 长时间暴露在紫外灯下,以防DNA 损伤。
2  称取凝胶的重量近似地确定其体积。
   ● 凝胶重量的称量方法:取1.5 ml 离心管电子天平称初质量,切胶装在离心管后称终质量,两者差即为胶的质量。不同厂家离心管的重量可能有差异,因此,每个离心管的重量需单独称量。
3  按照每100 mg 琼脂糖凝胶对应100 µl 溶液BD 的比例,向离心管中加入溶液BD。
4  50 ℃水浴7-10min,直至凝胶完全溶化。期间需要振荡混合3 次。
   ● 琼脂糖必须完全融化,以免堵塞柱子,严重影响DNA 段的回收效率。
   ● 如果总体积大于500 µl,可适当增加溶胶时间。
   ● 若此时溶液变红,可加10 µl 3M NaAC  (pH 5.2)。
5  将步骤4 所获溶液置于DNA 纯化柱中,静置2min 。
   ● 胶块完全溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱,因为纯化柱在较高温度时结合DNA  的能力较弱。
6  12,000 rpm 离心1min。若溶液量大于DNA 纯化柱的容积,可分两次离心,弃滤液。
   ● 此时DNA 被吸附于DNA 纯化柱中的硅胶膜上。
7  加入500 µl 溶液BD。12,000 rpm,  离心1min,弃滤液
8  加入500 µl 溶液PE。12,000 rpm,  离心1min,弃滤液。
   ● 溶液PE 初次使用前用无水乙醇按1: 4 稀释,即含80% 乙醇。
   ● 此步骤的作用是将硅胶膜上吸附的蛋白、盐等杂质洗脱,以获得高质量DNA 段。
9  加入500 µl 溶液PE。12,000 rpm,  离心1min,弃滤液。
10 12,000 rpm 离心  3min ,以彻底去除纯化柱中的液体。
   ● 此步骤的作用是去除残留乙醇,避免残留乙醇影响后续酶促反应。同时也利于DNA 段的充分溶解。
11  将离心柱置于新的1.5 ml 离心管中。向纯化柱的中央处,悬空滴加30-100 µl 溶液Eluent  (60℃预热),静置2min 。12,000 rpm  离心1min,管底即为目的DNA 段。贮存于-20℃。
   ● 溶液Eluent 可用无菌双蒸水代替,但其pH 需为8.0-8.5,加入体积视DNA 目的段的多少、用户对目的浓度要求而定。
   ● 对溶液Eluent 60℃预热,会提高提取DNA 目的段的产量。

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